Cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев

cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев

Универсальные накопительные среды Мясопептонный агар (МПА) и мясопептонный бульон (МПБ) • Являются основными средами для посевов микроорганизмов, для проверки чистоты культур перед биохимическим и серотипированием. • Их используют для культивирования и подсчета неприхотливых микроорганизмов. В полужидком виде среда Состав (г/л): может быть использована Пептический перевар животной ткани 5, 00 Мясной экстракт 1, 50 для хранения контрольных Дрожжевой экстракт 1, 50 Натрия хлорид 5, 00 (эталонных) Аналог – среда ГРМ Агар-агар 15, 00 микроорганизмов. (гидролизат рыбной муки) Конечное значение р. Н (при 25°С) 7, 4 ± 0, 2 11

Универсальные накопительные среды Среда Мюллера-Хинтона • • для определения чувствительности микроорганизмов к антимикробным средствам. Состав (г/л): Мясной настой 300, 00 Гидролизат казеина 17, 50 Крахмал 1, 50 Агар-агар 17, 00 Конечное значение р. Н (при 25°С) 7, 3 ± 0, 2 12

Дифференциально-диагностические среды Среда Мак. Конки • Среды Мак. Конки в качестве дифференциальных рекомендуют для селективного выделения энтеробактерий и близких к ним грамотрицательных палочек. Лактозоположительные штаммы растут с образованием розовых или красных колоний, которые могут быть окружены зоной преципитации желчных солей.

Красный цвет появляется в результате закисления среды продуктами разложения лактозы (при падении р. Н ниже 6, 8) и адсорбции нейтрального красного. Штаммы, не ферментирующие лактозу (шигеллы, сальмонеллы), обычно образуют прозрачные бесцветные колонии и не изменяют среду. Рост на среде Мак.

Конки (M 082) колоний Escherichia coli (крупные красные), Salmonella серовара Typhi (бесцветные), Staphylococcus aureus (мелкие красные) Enterococcus faecalis (точечные) Основные компоненты среды Мак.

Конки: Питательная основа: Пептический перевар животной ткани, Протеозопептон, Гидролизат казеина, Панкреатический перевар желатина, Лактоза Дифференцирующий фактор Соли желчных кислот (1, 5 г/л), Натрия хлорид (5 г/л) Индикатор Кристаллический фиолетовый, Нейтральный красный 13

Дифференциально-диагностические среды Среда Эндо • Эту среду рекомендуют для выделения и дифференциации грамотрицательных микроорганизмов кишечной группы. • Эта среда разработана Endo как культуральная среда для дифференциации микроорганизмов, ферментирующих и неферментирующих лактозу.

Она используется для микробиологического исследования воды, молочных и других пищевых продуктов. • Сульфит натрия и основной фуксин обладают подавляющим эффектом на грамположительные микроорганизмы. Лактоза разлагается микроорганизмами до альдегида и кислоты.

Альдегид в свою очередь освобождает фуксин из фуксинсульфитного комплекса, усиливая красное окрашивание колоний. У кишечных палочек эта реакция очень выражена и сопровождается кристаллизацией фуксина, что проявляется зеленоватым металлическим блеском (фуксиновый глянец) колоний.

Состав (г/л): Пептический перевар животной ткани 10, 00 Лактоза 10, 00 Калия гидрофосфат 3, 50 Натрия сульфит 2, 50 Фуксин основной 0, 50 Агар-агар 15, 00 Конечное значение р. Н (при 25°С) 7, 5 ± 0, 2 14

Дифференциально-диагностические среды Желточно-солевой агар • • Эту среду используют в качестве селективной для выделения клинически значимых культур стафилококков.

Среда содержат протеозопептон и мясной экстракт, что делает ее очень питательной ввиду содержания необходимых ростовых факторов. Вместе с тем рост бактерий, кроме стафилококков, подавляется высокой концентрацией (7, 5%) хлорида натрия.

Маннит является ферментируемым и дифференцирующим субстратом, а также источником углерода. Добавление (до 5% об/об) эмульсии яичного желтка дает возможность определить липазную активность микроорганизмов.

Эмульсия в солевой среде становится прозрачной, поэтому Состав (г/л): Протеозопептон Мясной экстракт Натрия хлорид D-Маннит Феноловый красный Агар-агар 10, 00 1, 00 75, 00 10, 00 0, 025 15, 00 Конечное значение р. Н (при 25°С) 7, 4 ± 0, 2 15

Дифференциально-диагностические среды Вильсона-Блера или Висмут-сульфитный агар • • • Селективная среда для выделения сальмонелл. Пептический перевар животной ткани и мясной экстракт служат источником азотистых питательных веществ, углерода, серы, витаминов группы В и микроэлементов, необходимых для роста указанных бактерий.

Бриллиантовый зеленый подавляет рост всех грамположительных бактерий. Глюкоза является ферментируемым углеводом. Сульфат железа позволяет выявить продукцию сероводорода. Висмут является тяжелым металлом, который подавляет рост большинства грамотрицательных кишечных бактерий, кроме сальмонелл.

Сальмонеллы восстанавливают сульфат железа в присутствии глюкозы и сульфита висмута до сульфида железа, который окрашивает их колонии в черный цвет.

Состав (г/л): Пептический перевар животной ткани 10, 00 Мясной экстракт 5, 00 Глюкоза 5, 00 Натрия гидрофосфат 4, 00 Железа сульфат 0, 30 Висмута сульфит, индикатор 8, 00 Бриллиантовый зеленый 0, 025 Агар-агар 20, 00 Конечное значение р. Н (при 25°С) 7, 7 ± 0, 2 16

Специальные элективные среды Среда Леффлера • Эту среду с добавлением лошадиной сыворотки используют для культивирования Corynebacterium diphtheriae из клинического материала и Состав (г/л): Пептон специальный 2, 50 Мясной экстракт 2, 50 Натрия хлорид 1, 25 Глюкоза 2, 50 Конечное значение р. Н (при 25°С) 7, 3 ± 0, 2 Перед разливом по чашкам добавить 750 мл стерильной лошадиной сыворотки 17

Специальные селективные среды Кампилобакагар • Селективная среду для кампилобактерий которая состояла из основы кровяного агара с бараньей кровью или лошадиной кровью и Селективная добавка : Основа состав (г/л): Полимиксин В 1250 МЕ Протеозопептон 15, 00 Ванкомицин 5, 0 мг Печеночный перевар 2, 50 Триметоприм 2, 5 мг Дрожжевой экстракт 5, 00 Амфотерицин В 1, 0 мг Натрия хлорид 5, 00 Цефалотин 7, 5 мг Агар-агар 12, 00 Конечное значение р. Н (при 25°С) 7, 4 ± 0, 2 Перед розливом среды в нее добавляют: стерильную лизированную кровь лошади (до 5 -7% об/об) или стерильную дефибринированную баранью кровь (до 18 10%) и селективную добавку для кампилобактеров

Техника посева на питательные среды 19

Методы выделения чистой культуры • Чистой культурой называют такую культуру, которая содержит микроорганизмы одного вида.

Выделение чистых культур бактерий обязательный этап бактериологического исследования в лабораторной диагностике инфекционных болезней, в изучении микробной загрязненности различных объектов окружающей среды, и, в целом, при любой работе с микроорганизмами. • Исследуемый материал (гной, мокрота, 20

Посев однократным истощающим штрихом Посев по секторам 21

Посев истощающим штрихом секторами Применяют для определения микробного числа мочи 22

Посев на скошенный агар, метод Шукевича • Посев на скошенный агар применяют для накопления и хранения чистой культуры бактерий • Метод Шукевича применяется для получения чистой культуры протея и Место посева культуры других микроорганизмов по Шукевичу обладающих «ползущим» ростом. Посев исследуемого Посев однократным штрихом 23

Посев уколом 24

Метод Дригальского 0, 1 мл материала вносят в первую чашку и стерильным стеклянным шпателем распределяют по поверхности среды. Затем этим же шпателем (не прожигая его в пламени горелки) делают такой же посев во второй и третьей чашках.

С каждым посевом бактерий на шпателе остается все меньше и, при посеве на третью чашку, бактерии будут распределяться по поверхности питательной среды отдельно друг от друга.

Через 1 -7 сут выдерживания чашек в термостате (в зависимости от скорости роста микроорганизмов) на третьей чашке каждая бактерия дает клон клеток, образуя изолированную колонию, которую пересевают на скошенный агар с целью накопления чистой культуры. 25

Метод Коха (метод серийных разведений) • последовательное разведение исследуемого материала в жидкой питательной среде до концентрации одной клетки в объеме. 26

Спасибо за внимание! 27

Источник: https://present5.com/pitatelnye-sredy-metody-i-texniki-posevov-mikroorganizmov/

Cреда Cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев

Представляя собой питательную среду для выращивания грибов различной природы (дрожжевых, плесневых), среду Сабуро может различаться по своему составу и в зависимости от компонентов использоваться для самых разных целей. В практике выращивания ацидофильных бактерий, дрожжей и патогенных грибов среда Сабуро считается наиболее питательной средой, которая позволяет использовать их в лабораторных анализах и исследованиях.

Что такое среда Сабуро

Представляя собой искусственную среду для питания грибов, простейших и бактерий, среда Сабуро позволяет выращивать и подсчитывать число и исследовать качество выращиваемой среды для контроля микробной загрязненности при употреблении нестерильных лекарственных препаратов. Внешне данное средство представляет собой порошок с повышенной степенью гигроскопичности, имеющий светло-желтый оттенок.

Состав среда Сабуро иметь может следующий:

  • гидролизат рыбной муки;
  • гидролизат казеина панкреатический;
  • однозамещенный натрия фосфат;
  • дрожжевой экстракт;
  • агар;
  • глюкоза.

Вместо глюкозы для проведения лабораторного исследования с применением среды Сабуро может использоваться также раствор мальтозы и дистиллированная вода.

Также могут при меняться такие разновидности данного типа среды, как пептонный агар Сабуро, где основным составляющим выступает пептон, среда Сабуро на дрожжевой воде, медовая среда Сабуро (здесь вместо глюкозы или мальтозы применяется натуральный мед), среда Сабуро, предназначенная для хранения выращенных культур.

Кому назначают исследование

cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев

  1. при наличии поражений кожи, которые могут иметь различный характер. С помощью среды Сабуро предоставляется возможность выделить наличие на коже штаммов бактерий и дрожжевых грибов, которые становятся причиной возникновения фурункулеза, кожной сыпи, воспалительных абсцессов;
  2. при проведении диагностирования особенностей среды на коже: увеличение активности дрожжевых грибов либо ацидофильных бактерий провоцирует частые отеки тканей, гиперемию, воспалительные процессы на коже;
  3. для определения наличия кандидоза;
  4. при выявлении парши, заболевания кожи, имеющего высокую степень активности и передающееся даже при небольшом контакте с зараженным человеком.

Основным преимуществом данной процедуры следует считать ее эффективность: даже при разовом проведении становится возможным выявить многие причины поражения кожных покровов, установить причины часто повторяющихся воспалительных процессов и абсцессов.

Однако для получения точного результата следует провести несколько таких реакций: точность ответа позволит назначить адекватное лечение, которое быстрее снимет имеющиеся симптомы и устранит причину заболевания.

Назначается среда Сабуро при необходимости проведения комплексной диагностики при выявлении многих кожных заболеваний, которые вызываются активным размножением дрожжевых грибов, ацидофильных бактерий.

Назначение процедуры делается врачом-дерматологом, и количество проводимых процедур также рассчитывается им.

При необходимости уточнения диагноза может назначаться две и более диагностические процедуры среда Сабуро.

При неоднократном повторении данной исследовательской процедуры отрицательного воздействия на организм выявлено не было.

Виды процедуры

В зависимости от компонентов, которые применяются для проведения анализа, процедура может различаться. Наиболее часто применимыми считаются следующие ее разновидности:

  • среда Сабуро на дрожжевой воде;
  • медовая среда Сабуро;
  • пептонный агар.
  • Перечисленные виды имеют несколько измененный состав, однако эффективность проведения не изменяется и реакция используется для определения наличия повышенного количества дрожжевых грибов и бактерий ацидофильного типа.
  • О приготовлении среды Сабуро расскажет данное видео:

Показания для проведения

  • К основным показаниям следует отнести такие состояния, как различные поражения кожи, которые возникают чрезмерно часто и сопровождаются такими агрессивными проявлениями, как воспалительные процессы, абсцессы, глубокие фурункулы.
  • Изменения среди и микрофлоры кожи, покраснения и высыпания также становятся причиной назначения данной реакции для постановки точного диагноза.
  • Белая пьедра.

Противопоказания для проведения

Однако при повышенной чувствительности кожи к компонентам среды Сабуро проведение данной реакции не назначается. Используются другие методы, позволяющие диагностировать кожные заболевания и выбрать схему их лечения.

Детский возраст (до года) и беременность с противопоказаниями к проведению подобных исследований также следует считать противопоказаниями к осуществлению среды Сабуро.

Схема среды Сабуро

cреда cабуро как диагностический метод: состав, приготовление, посев

Безопасно ли исследование

В большей мере данная реакция для исследования микрофлоры кожи назначается при отсутствии повышенной чувствительности кожи, однако в большинстве случаев она безопасна для организма человека.

Читайте также:  Поверхностный гастродуоденит: симптомы, причины, диагностика, лечение, диета, осложнения и прогноз

Про приготовления к проведению среды Сабуро читайте ниже.

Подготовка к процедуре

Чтобы результат проводимого анализа не был искажен, следует заблаговременно к ней подготовиться.

Сложностей в подготовке нет: накануне не рекомендуется принимать острую пищу, не употреблять алкоголь, перед процедурой при взятии образца кожи поверхность кожи полностью очищается. При приеме любых видов лекарств следует сообщить об этом лечащему врачу.

Как все проходит

Особых ощущений при исследовании микрофлоры кожи не возникает, поскольку для проведения анализа берется соскоб с кожи. Частички кожного покрова несут в себе все бактерии, которые выявляются при данной реакции.

Для выявления нарушений в составе микрофлоры, с поверхности кожи берется соскоб, который помещается в среду Сабуро. Далее проводится реакция, показывающая степень заселенности кожи определенными микроорганизмами (бактериями айидофильного происхождения, грибами).

Расшифровка результатов

Для назначения лечения следует получить точные данные реакции, и для этого требуются все знания лечащего врача с учетом всех факторов, являющихся специфическими для конкретого заболевания. По этой причине процесс расшифровки полученного анализа может проводиться только лечащим врачом-дерматологом.

О том, какова цена на питательную среду Сабуро в микробиологии, расскажем ниже.

Средняя стоимость процедуры

Цена данной процедуры зависит от места ее проведения, числа повторений процедуры и применяемого количества реактивов. Стоимость может колебаться от 1 280 до 1 970 рублей.

Еще больше полезной информации о методе Сабуро представлено в этом видео:

Источник: http://gidmed.com/dermatologiya/diagnostika-derm/sreda-saburo.html

Сравнительная оценка качества среды Сабуро отечественного и импортного производства

УДК: 579.083.13:576.8.083.3

Инфекция с участием грибов рода Candida spp. в настоящее время имеет устойчивый статус актуальной клинической проблемы. В последние годы грибы как возбудители болезней приобретают все больший удельный вес в структуре заболеваемости.

Борьба с микозами, их ранняя диагностика и терапия требуют многосторонних знаний о мицелиальных и тканевых формах возбудителей, использования иммунологических методов исследований и целенаправленного эпидемиологического обследования с выявления факторов, определяющих динамику развития микотических поражений [1].

Основная масса грибов относится к условно патогенным микробам (УПМ). Являясь составной частью окружающей среды, некоторые свободно живущие виды грибов, контактируя с организмом в условиях сниженного иммунного статуса, колонизируют биотопы организма, вызывая развитие ГВЗ. Чаще всего микотические поражения человека вызывают дрожжеподобные грибы рода Candida: C. albicans, C.

glabrata, C. parapsilosis, C. tropicalis, реже других видов. Возрастание случаев микозов среди населения связано с ухудшением экологических условий, нерациональным использованием антибиотиков, увеличением в популяции доли иммуноком- прометированных лиц.

Дифференциацию дрожжеподобных возбудителей проводят по культуральным, морфологическим и тинкториальным, ферментативным и антигенным свойствам. Существуют тест-системы, облегчающие работу микробиологов по идентификации дрожжеподобных грибов, в тоже время необходимость изучения ферментативной и ассимиляционной способности грибов по стандартным методикам, остается актуальной.

В ГНЦ ПМБ поставлена задача разработки среды для выделения грибов, содержащей в своем составе глюкозу, утилизируемую всеми грибами рода Candida.

Для выделения и количественного учёта C. albicans при санитарно-микологических исследованиях в среды добавляются антибиотики, 2% раствор теллурита калия, метабисульфит натрия или калия.

Белковой основой классического варианта среды Сабуро является пептон (мясной или казеиновый). В ГНЦ ПМБ белковой основой разрабатываемых сред является панкреатический гидролизат рыбной муки и панкреатический гидролизат казеина, обеспечивающие питательные потребности не только широкого круга бактерий, но и грибов.

Цель исследования

Изучение диагностической ценности (специфическая активность: чувствительность, скорость роста, стабильность основных биологических свойств микроорганизмов, дифференцирующие и ингибирующие свойства), питательной среды для выращивания и подсчёта числа дрожжевых и плесневых грибов № 2 ГРМ (Сабуро) в сравнительных испытаниях с коммерческими препаратами, выпускаемыми в соответствии с нормативной документацией и в период их срока годности.

А. П. Шепелин ФБУН «Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии» Роспотребнадзора, Московская обл., п. Оболенск

Проведена сравнительная оценка качества питательной среды Сабуро отечественного (ФГУН ГНЦ ПМБ) и импортного производства (Pronadisa, HiMedia). Отечественная среда Сабуро ГНЦ ПМБ намного дешевле импортных.

Состав питательной среды № 2 ГРМ Сабуро обеспечивает чёткие морфологические признаки, являющиеся основой дифференциальной диагностики грибов рода Candida от других дрожжеподобных грибов, плесневых грибов и микробов-ассоциантов.

Качество питательной среды Сабуро производства ГНЦ ПМБ не уступает импортным аналогам по всем параметрам, а по некоторым показателям превосходит их.

Материалы и методы

Материалами для исследования служили питательная среда № 2 ГРМ (Сабуро), питательные агары Сабуро различных фирм-производителей: Sabouraud Dextrose Agar (Pronadisa, Испания) и Sabouraud Dextrose Agar (HiMedia, Индия), в качестве ингибитора использовался 2% раствор теллурита калия.

Для определения специфической активности сравниваемых питательных сред использовались следующие музейные тест-штаммы микроорганизмов: Candida albicans, Aspergillus niger, Bacillus cereus, Staphylococcus aureus, Enterobacter cloacae, Enterobacter aerogenes, Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Staphylococcus epidermidis, получены из ГИСК им. Л. А. Тарасе- вича, а также отдела коллекционных культур ФГУН ГНЦ ПМБ.

Взвеси тест-штаммов и микробов ассоциантов готовили в 0,9% растворе хлорида натрия в концентрации, соответствующей 10 единицам по стандартному образцу мутности бактериальных взвесей ГИСК им. Л. А. Тарасевича (ОСО 42-28-59-86П). Исходные взвеси доводили до нужных концентраций, используемых при исследованиях в соответствии с Инструкциями для каждого испытуемого и контрольного препаратов.

Источник: https://epidbiomed-d.ru/professor/stati/sravnitelnaya-otsenka-kachestva-sredy-saburo-otechestvennogo-i-importnogo-proizvodstva/

Посев бактерий: способы и техника, питательные среды

Посев различных  бактерий представляет собой один из наиболее эффективных и широко распространенных способов, который в настоящее время активно применяется в сфере медицинской микробиологии.

Также данный метод незаменим в области биотехнологии, где он играет важную роль в изучении различных свойств как биологического, так и биохимического характера.

Под данным методом подразумевается процесс культивирования микроскопических организмов с использованием питательных сред, различающихся между собой по характеристикам и свойствам.

Бактериологические посевы могут проводиться с целью тщательного исследования отделяемых клеток глаз, половых органов человека, а также с целью максимально точного анализа крови, мочи или кала. Также выполняются бактериальные посевы спермы и мокроты для исследования. Довольно часто встречается процедура посева на анаэробные бактерии.

Какими бывают среды для питания бактерий

При выборе среды для осуществления посева в первую очередь следует ориентироваться на характер содержания, присущего бактериям, которые являются главным объектом исследования. В том случае, если необходимо получить изолированные колонии бактерий, а также определить чистую культуру, следует выполнять посев на плотные питательные среды.

Но если материал, подверженный исследованию, содержит в себе не очень большое количество микроорганизмов, можно в этих целях использовать жидкую питательную среду.

Существует несколько разновидностей питательных сред, в которых осуществляется бактериальный посев. Итак, принято различать простые и специальные среды, а также элективные и дифференциально-диагностические. Каждая категория сред питания отличается своими индивидуальными особенностями и характеристиками.

Простые питательные среды, в свою очередь, бывают как плотными, так и жидкими. В первом случае это мясопептонный агар, а во втором  – мясопептонный бульон.

Главной особенностью специальных сред является абсолютная замена основы либо смешивание ее с другим компонентом, обладающим специфическими свойствами и характеристиками.  В результате такого процесса можно выделить следующие виды питательных сред:

  • агар  на основе сыворотки;
  • агар на основе казеина и активированного угля;
  • яичная среда, открытая бактериологами Леванштейном и Йенсеном;
  • бульон на основе агара и стерильной дефибринированной крови кролика, лошади или барана.

Известны в микробиологии и элективные питательные среды, отличительной чертой которых является получение роста только того из микроорганизмов, который на данный момент представляет интерес для исследования.

К элективным средам относят:

  • пептонную воду;
  • щелочной агар;
  • среду Мюллера;
  • среду Леффлера;
  • желточно-солевой агар;
  • селенитовую среду.

С целью исследования сальмонелл бактерии высеиваются на селенитовую среду и среду Мюллера. Наиболее эффективной для работы с коринебактериями дифтерии признана питательная среда Леффлера. Для стафилококка бактерии высеивать необходимо на желточно-солевой агар, а для холерного вибриона – в пептонную воду.

При помощи дифференциально-диагностических питательных сред появляется возможность проведения максимально точной идентификации отдельно взятых категорий, групп и типов бактерий. Среди данных сред можно выделить два основных типа – это:

  • среда Сабуро, для которой характерно добавление антибиотика;
  • среды Гисса, также известные под названием «пестрый ряд».

Какие различают способы и техники посева

Принято различать несколько техник и методов посева. В большинстве случае данный процесс осуществляется при помощи специальных микробиологических петель.

При посеве на специальные чашки Петри данный процесс происходит с применением особых игл или шпателей, изготовленных из стекла или металла.

Такой инструмент, как бактериальная петля, можно с уверенностью назвать универсальным, поскольку он применяется в разных техниках бактериального посева. В случае с жидкими материалами применяют специальную петлю в сочетании с пипетками – пастеровскими или градуированными.

Инструмент под названием чашка Петри предназначен специально для осуществления посева на плотные питательные среды.

Это выполненный в форме невысокого и плоского цилиндра лабораторный сосуд, изобретенный в 1877 году знаменитым немецким бактериологом Юлиусом Ризардом Петри, который являлся ассистентом микробиолога Роберта Коха.

Для изготовления чашки Петри, как правило, используют стекло либо полистирол с прозрачной текстурой. Самый широко используемый размер чашки Петри – высота до 15 миллиметров и диаметр от 50 до 100 миллиметров.

В данном случае техника бактериального посева такова: немного приоткрывают крышку чашки Петри, а затем наносят на поверхность плотной питательной среды – агара – требуемое количество посевного материала.

После того как произойдет инкубация бакпосева, бактерии начнут расти густо и равномерно, превращаясь в полноценную культуру и подразделяясь на отдельные колонии.

В данном процессе можно использоваться как стеклянные, так и пластмассовые чашки Петри. Первый вид предназначается  для многоразового, а второй – для одноразового применения.

Пластиковые чашки Петри являются стерильными, а поставляют их в специальных надежных герметических упаковках.

Стеклянные сосуды, в свою очередь, требуют тщательной стерилизации перед осуществлением каждого нового посева.

Если при бакпосеве на плотные среды применяются чашки Петри, то в случае с жидкими средами можно использовать пробирки. Бактериальный посев позволяет быстро вырастить культуру бактерий с определенными свойствами и характеристиками.

Особенности бактериального посева мочи

Анализ, подразумевающий бактериальный посев мочи, предназначается для выявления, идентификации различных микроорганизмов, а также позволяет определить точную их концентрацию.

Чтобы провести данную процедуру, мочу, которая является в данном случае основным биоматериалом, помещают в специальную среду питания, которая окажется для нее максимально благоприятной.

Если после этого микроорганизмы не начнут расти, результат анализа является отрицательным.

Если же после проведения такого анализа концентрация микроорганизмов в моче окажется достаточно высокой для их размножения, то его результат, бесспорно, положителен.

В каких случаях пациентам назначают анализ мочи с посевом бактерий?

Проведение анализа с бактериальным посевом мочи является актуальным в нескольких случаях:

  • при наличии инфекционных заболеваний органов мочевыводящей системы;
  • при заболевании сахарным диабетом;
  • при беременности;
  • с целью уточнения диагноза, если заболевание носит нетипичный характер.
Читайте также:  Неприятные ощущения в ухе при глотании и при повороте шеи или головы

Для проведения этого вида анализа требуется утренняя порция мочи пациента, приблизительное количество которой составляет от трех до пяти миллилитров.

Перед сбором мочи на анализ пациент должен обязательно провести соответствующие гигиенические процедуры, однако применять при этом средства с антисептическими свойствами нельзя. Доставку собранной мочи для анализа необходимо производить в кратчайшие сроки.

С этой целью применяется стерильный одноразовый контейнер, который гарантирует правильную транспортировку и максимально точные результаты.

Образование высшее филологическое. В копирайтинге с 2012 г., также занимаюсь редактированием/размещением статей. Увлечения — психология и кулинария.

Источник: https://probakterii.ru/prokaryotes/raznoe/posev-bakterij.html

Лабораторная диагностика кандидоза

грибы рода Candida размножаются на любом биологическом субстрате.

В связи с тем, что для заболевания кандидозом характерен полиморфизм клинических проявлений лабораторному исследованию подлежит разнообразный патологический материала. В зависимости от характера и локализации поражения, для лабораторного анализа берут:
• мокроту; • соскобы с кожи или слизистых оболочек; • ногтевые чешуйки; • кровь, ликвор, мочу, желчь, фекалии; • пунктаты из закрытых полостей, отделяемое свищей; • биопсированный и секционный материал. Вначале производят исследование нативного материала (за исключением крови); при этом ликвор, мочу и желчь подвергают (!) предварительному центрифугированию (1500 — 2000 об/мин, 10 — 15 мин). Препараты готовят в 10 — 20% растворе щелочи при слабом нагревании. Обнаружение нитчатой фазы возбудителя (мицелия или псевдомицелия) является важным свидетельством наличия кандидоза. Количество дрожжевых клеток в каждом поле зрения служит ориентиром при подготовке серийных разведений для количественного посева на плотные питательные среды: единичные клетки в поле зрения при большом увеличении микроскопа (х400) свидетельствуют об их содержании порядка десятков тысяч в 1 мл исследуемого материала. Разведения патологического материала, содержащего нормальную микрофлору (мокрота, фекалии, моча, желчь и т.д.), готовят в жидкой питательной среде (обычно жидкое сусло или жидкая среда Сабуро) и затем высевают определенное количество материала (0,1 — 0,2 мл) на аналогичные плотные среды. Для подавления роста контаминирующих бактерий в среды добавляют антибактериальные антибиотики (чаще всего применяют пенициллин и стрептомицин: по 50 — 100 ед/мл среды или 0,05% хлорамфеникола). Если вместо соскобов использованы смывы, то тампоны предварительно встряхивают в течение нескольких минут в 5 — 7 мл жидкой питательной среды, а затем производят посев на плотные среды определенного объема соответствующего разведения исходной взвеси. Соскобы с кожи и ногтевых пластинок помещают на скошенные питательные среды. Посев крови и ликвора производят в 10-кратный объем жидкой среды Сабуро или МПБ с 2% глюкозы без добавления антибиотиков, так как кандидозная фунгемия иногда сочетается с бактериальным сепсисом. Наиболее высокую эффективность выделения грибов из крови удалось обеспечить при использовании комбинированной сердечно-мозговой среды. Посев крови делают 3-4-кратно, осуществляя забор из разных вен с интервалом в несколько дней при (1) отсутствии парентерального питания или (2) капельного введения лекарственных веществ. При наличии у больного фунгемии рост грибов появляется через 24-48 ч, максимальная инкубация осуществляется до 30 суток при периодических пересевах на плотную питательную среду. Биопсированный и секционный материал используют для приготовления гистологических препаратов (окраска PAS-методом), а остатки материала высевают (методом отпечатков или после предварительного измельчения) на плотные и в жидкие питательные среды. Инкубацию предпочтительнее проводить при 25 — 30оС, хотя патогенные для человека виды грибов хорошо растут и при 37оС. Достаточных размеров колонии формируются через 48 ч культивирования, хотя точечный рост можно обнаружить уже на следующий день после первичного посева. При отсутствии роста на агаровых средах делают высев с жидких питательных сред на сектора для получения изолированных колоний. При исследовании мочи наряду с культуральным методом рекомендуется дополнительное исследование, имеющее целью (!) выявление иммуноглобулинов человека на поверхности бластоспор. Для этого около 5 мл второй порции мочи центрифугируют в течение 5-10 мин при 1500 об/мин и из осадка готовят (1) нативные препараты и мазки, окрашенные по Граму, а также (2) препараты для иммунолюминесцентного исследования при котором фиксацию осуществляют метанолом, а после высушивания мазка наносят антисыворотку против глобулинов человека, меченную изотиоцианатом флюоресцеина. В осадке мочи больных мочекаменной болезнью нередко (около 7% проб) присутствуют клетки золотистого стафилококка (В.Г. Кубась и соавт.), которые за счет наличия у них белка А неспецифически связывают Fc-фрагменты IgG, что может привести к получению ложноположительных результатов реакции иммунолюминесценции. При выявлении грамположительных кокков для блокировки белка А рекомендовано (В.Г. Кубась и соавт.) к осадку мочи добавлять равный объем кроличьего глобулина с концентрацией белка 1,0 мг/мл. После (1) инкубации смеси при 37оС в течение 30 мин и (2) 3-кратного промывания осадка фосфатным буферным раствором (3) готовят мазки и (4) фиксируют их метанолом. Предварительная обработка кроличьим глобулином взвесей золотистых стафилококков (100-500 млн/мл) подавляла их неспецифическую флюоресценцию. Выявление светящихся дрожжевых клеток при параллельном обнаружении дрожжей в нативном и окрашенном по Граму препаратах свидетельствует о том, что они несут на своей поверхности специфические глобулины, то есть о наличии у пациента тканевых поражений. Положительный антиглобулиновый тест свидетельствует о кандидозном поражении мочевыводящих путей. Контролем для исключения аутофлюоресценции дрожжевых клеток является исследование неокрашенного препарата. (!) Видовое определение выделенных культур является важным критерием диагностики и имеет комплексный характер, включающий (1) изучение внешнего вида колонии, (2) ферментативной активности и (3) ассимиляционной способности штамма, (4) типа филаментации, а также (5) характера роста в жидкой питательной среде (наличие поверхностной пленки, поднимающееся по стенке пробирки над поверхностью среды кольцо и т.д.). Большинство патогенных для человека видов грибов рода Candida может быть идентифицировано без постановки ассимиляционного теста. Из-за резкого преобладания C. albicans у больных и миконосителей, у выросшей культуры прежде всего выявляют наличие характерного морфологического признака этого вида — хламидоспоры. С этой целью производят прерывистый штриховой посев на рисовый агар, часть посева покрывают фламбированным покровным стеклом. Посевы инкубируют при 37оС или при 22оС. Подавляющее большинство штаммов C. albicans образуют хламидоспоры через 12-24 ч, реже — через 48 ч. Выявление хламидоспор позволяет идентифицировать культуру как C. albicans и не проводить дальнейших исследований. Культуры, у которых хламидоспоры выявить не удалось, исследуют по комплексу признаков. Ферментативную активность определяют на обычных средах «пестрого ряда» или в дрожжевом аутолизате, в которых конценирация углеводов должна составлять 2%. Инкубацию проводят при 25-28оС. Некоторые штаммы могут вызывать ферментацию в поздние сроки (10-20 дней), поэтому для ускорения процесса рекомендуют использовать агаризованные Среды (0,1-0,15% агар-агара); при этом срок наблюдения сокращается до 2 дней. При постановке ассимиляционного теста в стерильную чашку Петри вносят 1-2 мл взвеси культуры, которую заливают 18-20 мл базовой среды с добавлением дрожжевого аутолизата, охлажденной до 43-45°. После застывания агара его подсушивают и на поверхность наносят стерильные диски фильтровальной бумаги, пропитанной 20% или насыщенным раствором изучаемого источника питания. Можно также на поверхность агара наносить небольшие количества нерастворенного источника питания. Чашки инкубируют в перевернутом виде при 25-28оС; в положительных случаях в течение 2-4 дней вокруг источника питания обнаруживается рост культуры гриба. Для выявления типов роста посев осуществляется на картофельный агар с 1% глюкозы методом «врезания»: микологическую лопатку с биомассой культуры погружают на 1/3 толщины агара, причем посев делают в виде двух сходящихся, но не пересекающихся лучей. Чашки инкубируют в течение суток при 37оС, а затем при 25оС. Нитчатая форма образуется в толще агара по периферии посева в течение 3-7 дней. При задержке филаментации культуру засевают на среду Городковой, посевы инкубируют при 22оС в течение 10-15 дней, периодически исследуя для выявления аскоспор. Также наряду с микроскопическим исследованием нативных препаратов, мазки окрашивают по Цилю-Нильсену; при этом кислотоустойчивые споры воспринимают рубиново-красную окраску. Эффективное окрашивание спор истинных дрожжей достигается при использовании 2% водного раствора фуксина. В последнее десятилетие разработан ряд автоматизированных систем для видовой идентификации грибов рода Candida, в основу которых положено определение ассимиляционной способности изучаемых культур. Каждая лунка содержит определенный источник питания, посевы инкубируются при 30оС в течение 24 ч. Помутнение среды свидетельствует об ассимиляции данного источника питания, регистрация результатов производится фотометрически. При помощи компьютера по нумерационно-кодовому принципу осуществляют видовое определение штамма.

Серологическая диагностика. Высокую диагностическую значимость имеет реакция непрямой иммунолюминесценции. У большинства здоровых лиц ее интенсивность составляет 1:10 — 1:20, диагностическим считается титр 1 и более.

Для реакции агглютинации частиц латекса, сенсибилизированных соматическими антигенами, диагностическим считают титр 1:8; у больных с выраженной иммуносупрессией диагностическое значение имеет 4-кратное увеличение титра в процессе заболевания.

Для поиска антигенов гриба используют частицы латекса, сенсибилизированные антителами, но во избежание ложноположительных результатов, в сыворотке должен отсутствовать ревматоидный фактор.

При использовании встречного иммуноэлектрофореза выявление 2 и более дуг преципитации имеет диагностическую ценность. У здоровых лиц, а также у больных поверхностным кандидозом дуги преципитации, как правило, отсутствуют. При перекрестном иммуноэлектрофорезе у больных висцеральным кандидозом выявляется в среднем 10 дуг преципитации (пределы колебаний — 5-20), при кандидозном эндокардите — около 8 (1-11), а в контрольной группе — 2 (0-5). Специфичность метода увеличивается при использовании промежуточного геля с конкавалином А, который связывает маннан, содержащийся в виде примеси в препаратах соматических антигенов. Большую ценность, чем титрование антител, имеет определение в сыворотке циркулирующих антигенов гриба, особенно цитоплазматических. Определение антигенов осложняется формированием в сыворотке иммунных комплексов. Полисахаридные антигены высвобождаются из этих комплексов кипячением, для белковых антигенов методы выделения не разработаны. При диссеминированном кандидозе маннан выявляют у 50-70% больных при его отсутствии у здоровых лиц, что придает находке диагностическую значимость. Методом газо-жидкостной хроматографии в сыворотке определяют метаболиты гриба — маннозу и арабинитол. Определение сывороточного содержания арабинитола основывается на способности некоторых видов (C. albicans, C. tropicalis, C. pseudotropicalis, C. parapsilosis) синтезировать это вещество. При почечной недостаточности рекомендуется одновременное определение концентрации арабинитола и креатинина, так как скорость выделения этих веществ одинакова.

Диагностика системного кандидоза. Своевременный диагноз системного кандидоза представляет значительные трудности, поскольку клиническая симптоматика неспецифична. В диагностике кандидоза основная роль принадлежит лабораторным методам исследования: микроскопическим, культуральным, газохроматофическим и молекулярным.

Выявление кандидемии считается наиболее значимым диагностическим маркером гематогенного кандидоза и служит абсолютным показанием к проведению противогрибковой терапии. Следует иметь в виду, что системный кандидоз может не сопровождаться кандидемией. Наиболее важным признаком диссеминированного кандидоза является грибковый эндофтальмит (экссудативные изменения желто-белого цвета сосудистой оболочки глаза). Поэтому офтальмологическое обследование считается весьма значимым в комплексе диагностики и мониторинга больных, имеющих факторы риска диссеминированной кандидозной инфекции. Однако кандидозный эндофтальмит не является начальным признаком генерализации грибковой инфекции, даже у больных с кандидемией поражение сетчатой оболочки выявляют лишь в 9-15% случаев. Другие проявления диссеминированного кандидоза (в частности, поражения кожи и артрит) отмечаются крайне редко у больных в ОИТ. После операций, не затрагивающих почки, мочевой пузырь, а также в тех случаях, когда не было длительной катетеризации мочевого пузыря, кандидурия с выделением большого числа КОЕ является весьма подозрительным симптомом гематогенного поражения почек. Серологические методы включают определение антител к Candida spp. с помощью различных методов: (1) агглютинации, (2) иммуноэлектрофореза и (3) иммунодилюции. К сожалению, интерпретация получаемых данных часто затруднительна, поскольку антитела обнаруживаются и у здоровых людей, и в случаях обычной колонизации. Более того, эти методы дают отрицательный результат при грибковой инфекции у больных с иммунодефицитными состояниями и в начальной стадии системного кандидоза. Большей информативностью обладают серологические методы определения антигенов Candida spp., однако они также обладают лишь умеренной чувствительностью в случаях системного кандидоза. Перспективным методом диагностики является хроматографическое определение метаболитов грибов — D-арабинитола в различных биологических жидкостях и тканях инфицированных больных. Большинство патогенных Candida spp. (кроме С. crusei и C. glabrata) продуцируют значительное количество D-изомера арабинитола, и в сыворотке больных при инвазивном кандидозе определяется его повышенное содержание, а также повышение отношения D-арабинитол/креатинин. В проспективных клинических исследованиях подтверждена значимость серийных определений D-арабинитола для диагностики кандидоза у онкологических больных с нейтропенией. Однако инвазивный кандидоз во многих случаях протекает без кандидемии, что не может не отражаться на содержании D-арабинитола в крови и снижает диагностическую ценность метода.

Читайте также:  Причины, почему моча у детей, мужчин, женщин и при беременности может пахнуть аммиаком

Весьма информативным является метод молекулярной лабораторной диагностики — полимеразная цепная реакция (ПЦР), позволяющая определить специфические области ДНК C. albicans, а также других грибов, в частности Аspergillus spp. Чувствительность ПЦР достигает 100%, а специфичность — 98%.

По данным H.Einsele и соавт. (1997), положительная ПЦР позволяет в среднем на 4 дня раньше, чем при обычном обследовании, установить диагноз диссеминированного кандидоза или легочного аспергиллеза. Высокая чувствительность метода позволила K.Ikegami и соавт.

(1999) определить наличие ДНК грибов в крови у более 50% больных в критическом состоянии, у которых не было фунгемии, а у многих также и признаков системной воспалительной реакции. Однако, по мнению M.

Ruhnke (1999), подтверждение диагностической роли молекулярных методов исследования нуждается в дальнейших доказательных клинических исследованиях.

Источник: http://doctorspb.ru/articles.php?article_id=1543

ПОИСК

    Требования к ростовым свойствам питательных сред. Тиогликолевая среда и среда Сабуро должны обеспечивать визуально обнаруживаемый рост соответствующих тест-штаммов аэробных и анаэробных бактерий и грибов (предусмотренных НТД). [c.

193]

    Микологическое (культуральное) исследование направлено на выделение чистой культуры гриба и ее идентификацию.

Посевы производят на плотные и жидкие, неселективные и селективные питательные среды Сабуро, сусло-агар, Чапека, кукурузный, ри- [c.315]

    Для контроля стерильности растворов лекарственных средств, выпускаемых в виде порошков, лиофилизированных препаратов и пр., содержимое каждой емкости предварительно растворяют в стерильном растворителе. Затем из каждых 10 емкостей одной группы отбирают полученный раствор в количестве, соответствующем 200 мг лекарственного средства, и переносят в колбу, содержащую 100 мл аналогичного растворителя. Приготовленный раствор немедленно фильтруют После отмывания фильтра, как указано выше, одну половину его помещают в колбу с тиогликолевой средой, вторую — в колбу со средой Сабуро. [c.191]

    Определение антимикробного действия лекарственного средства. Во избежание неправильной оценки результатов анализа необходимо определить однократно для каждого наименования лекарственного средства, обладает ли оно антимикробным действием.

Для этого в две пробирки с 10 мл тиогликолевой среды и в две — с 10 мл среды Сабуро добавляют соответствующее количество исследуемого лекарственного средства (табл. 12) и вносят в каждую пробирку по 0,1 мл микробной взвеси соответствующего тест-штамма, содержащей 1000 клеток в 1 мл.

Посевы в тиогликолевой среде инкубируют при температуре от 30 до 35 °С в течение 48 ч, а на среде Сабуро — при температуре от 20 до 25 °С в течение 72 ч. [c.188]

    Посев лекарственных средств. Для контроля стерильности лекарственных средств применяют тиогликолевую среду и жидкую среду Сабуро. При этом используют метод прямого посева на питательные среды или метод мембранной фильтрации. [c.188]

    Для контроля стерильности применяют Сухую питательную среду для контроля стерильности (тиогликолевую) отечественного производства (ТУ 42.14 № 161-79) и среду Сабуро (жидкую). Вместо коммерческой тиогликолевой среды может быть использована тиогликолевая среда индивидуального приготовления. [c.192]

    Картофельный агар с глюкозой отличается тем, что берут 100 г протертого картофеля и после фильтрования среды добавляют 10 г глюкозы. Стерилизуют, как среду Сабуро. [c.317]

    Фильтрование отобранных образцов проводят в асептических условиях. Испытуемый раствор пропускают с помощью вакуума через одну или несколько мембран.

При испытании лекарственных средств с антимикробным действием или содержащих консервант после окончания фильтрации мембрану необходимо промыть 3—5 порциями по 100 мл соответствующего растворителя, например раствора натрия хлорида изотонического 0,9 % для инъекций или жидкости № 1 (см. с. 193), при испытании мазей— жидкости № 2 (см. с. 193).

Посл отмывания мембраны ее извлекают, разрезают стерильными ножницами пополам и одну половину помещают в колбу со 100 мл тиогликолевой среды, вторую—в колбу со 00 мл среды Сабуро. Питательные среды с помещенными в них фильтрами выдерживают при температуре [c.190]

    При испытании лекарственных средств посевы в тиогликолевой среде инкубируют при температуре от 30 до 35 °С, а в среде Сабуро — от 20 до 25 °С. Продолжительность инкубации посевов в обеих питательных средах составляет 14 сут. [c.327]

    Микологическое исследование. Для вьщеления чистой культуры материал сеют на среду Сабуро, питательные среды с углево- [c.329]

    Микологическое исследование. Для выделения чистой культуры гриба делают посевы на среду Сабуро и другие микологические среды. Полученные колонии идентифицируют по морфологическим, культуральным и биологическим свойствам (см. цв. вклейку, рис. 29). [c.324]

    При испытании мазей и растворов лекарственных средств в маслах от каждой из 10 емкостей отбирают по 100 мг препарата в колбу со 100 мл растворителя (изопропилмиристат и др.), который предварительно подогревают до температуры не выше 45 °С и стерилизуют фильтрованием через мембраны с размером пор (0,22 0,02) мкм.

После фильтрации образца мембрану промывают двумя — тремя порциями по 200 мл жидкости № 2 и затем одной — двумя порциями жидкости № I. Половину мембраны помещают в тиогликолевую среду, другую — в среду Сабуро, в которые предварительно вносят стерильный твин-80 из расчета I г на 1000 мл среды. [c.

191]

    Во второй серии опытов изучали действие препаратов на грибки в патологическом материале (волосы, кожные чешуйки), взятом с очагов поражения больных микроспорией.

Пораженные волосы и кожные чешуйки помещали в стерильные стеклянные чашечки, заливали водными эмульсиями соединений возрастающих концентраций. Через 24, 48, 72 часа производили высевы на среду Сабуро.

Перед посевом кусочки волос и чешуек отмывали стерильным физиологическим раствором. Наблюдения за посевами продолжались не менее 30 дней. [c.525]

    Используемые питательные среды должны обеспечивать рост микроорганизмов при посеве их в количестве менее 100 жизнеспособных клеток для тиогликолевой среды — не позднее 48 ч инкубации при температуре от 30 до 35 °С и для среды Сабуро — не позднее 72 ч инкубации при температуре от 20 до 25 °С. [c.193]

    Вьщеление культур производится на среде Сабуро или других микологических средах при 25—28 С (рост появляется на 3— 12-е сут). [c.335]

    Микологическое исследование. Выделение чистой культуры ведут путем посева, например, на среду Сабуро.

На среде Сабуро образуются колонии диаметром 3 — 4 см серовато-коричневого или оливкового цвета, бархатистые, сьсладчатьге, кратерообразные. При бактериоскопии находят септированный мицелий и конидиефо-ры коричневого цвета.

Только обнаружение тканевых форм гриба и получение чистой культуры позволяет установить диагноз болезни. [c.337]

    Род и вид грибка Концентрация соединений в среде Сабуро (посев культур грибков) 1 к i м о с 3 о о СГ) Концентрация соединений при заливке патологического материала. содержащего грибки Токсичность, мг/кг (белые мыши, подкожно)  [c.529]

    При испытании мазей и растворов лекарственных средств в маслах отбирают асептически по 0,1 г (мл) от каждой единицы и вносят в стерильную колбу вместимостью 250 мл, содержащую стеклянные бусы, 100 мл / 5М0Л фосфатного буферного раствора (pH 6,8—7,0) и эмульгатор.

Перед проведением испытания содержимое колбы подогревают до температуры (41 1) °С. Колбу с испытуемым образцом встряхивают не более 30 мин до получения однородной эмульсии. Полученную эмульсию в количестве 5 мл переносят в колбу с 40 мл тиогликолевой среды и 5 мл — в колбу с 40 мл среды Сабуро.

Посевы инкубируют 14 сут при соответствующей температуре для каждой питательной среды. [c.189]

    Кроме того, можно использовать среду Сабуро (см. подразд. 5.

2), а также среду следующего состава кукурузного экстракта — 5,0 г, картофельного крахмала — 15,0 г, аминосульфита — 4,0 г калия дигидрофосфата — 2,0 г кальция карбоната — 3,0 г агар-агара — 20,0 г, дистиллированной воды — 1000 мл (pH 6,8 —7,0). Чашки с засеянными средами инкубируют при 37 °С. Рост появляется через [c.205]

    Биологическое исследование. Хорошие результаты дает внутрибрюшинное заражение исследуемым материалом белых мышей или золотистых хомячков.

Через 1 мес после заражения животных забивают, измельченные печень и селезенку засевают в три пробирки с глюкозной средой Сабуро и выдерживают 4 нед в термостате при 25, 30 и 37 °С, затем в посевах определяют наличие гистоплазм. [c.332]

    Модификации — это смена фенотипов при изменении условий существования клона. Например, вид andida irapi /isB субклоновых культурах на сусле-агаре может образовывать рудиментарные коремии.

При пересеве этих субклонов на среду Сабуро можно наблюдать быструю реверсию их в исходное состояние (гладкая форма колоний).

Следовательно, конкретный фенотип данного вида микроба воспроизводится в совершенно определенных условиях его существования и всецело зависит от генотипа или наследственной конституции клетки, [c.100]

    Род н вид грибка Концентрация соединений в среде Сабуро (посев культур грибков) к я я- Концентрация соели-нений при заливке патологического материала, солержагцего гркбки Токсичность, мг кг (белке мыши, подкожно)  [c.527]

    Параллельно производили контрольный высев необработанной суспензии.

После семидневной инкубации нри температуре +28 определяли летальный эффект НММ (количество выживших после обработки колоний по отношению к контролю), учитывали морфологическую изменчивость. У отсеянных субкультур определяли антибиотическую активность.

Противогрибковую активность определяли методом серийных разведений на агаризовапной среде Сабуро по задержке роста тест-организма — Try hophyton gyp-seum. [c.42]

    В жидкой среде Сабуро из комочка лорикоконидий через 48 часов вырастают длинные гифы гриба. Часть их отделяется и оседает на дно, образуя скопления радиально расходящихся гиф, остальные образуют на поверхности среды пленку с плодоношениями.

Через 7 дней после инокуляции (при 22° С) на стенках пробирки появлялись первые конидии. Затем пленка отделяется от стенок пробирки и опускается на дно, а на ее месте вырастает новая пленка из гиф. Покоящиеся споры образуются через 10 дней. [c.

315]

Источник: https://www.chem21.info/info/1432192/

Ссылка на основную публикацию